Az antocianin molekulák széles spektrumú védelme
A bogyós gyümölcsök sötét vöröses-kékes színét az antocianin molekuláknak köszönhetik
Az antocianin molekulák sokoldalú élettani hatásai
Számos kutatás bizonyítja, hogy a leghatékonyabb antioxidánsnak azon bogyós gyümölcsök bizonyulnak, melyek tartalmazzák az antocianin nevezetű polifenol vegyületeket. Ezek a vegyületek okozzák a vörös áfonya, fekete áfonya, bodza, fekete szeder, açaí bogyó, málna, eper, ribizli, szilva, cseresznye stb. vöröses-kékes színét [1,6-8]. Ezek az antocianinok hatékonyan veszik fel a harcot az oxidatív stresszel szemben, mely számos betegség kiváltó oka [1] (Parkinson kór [9], Alzheimer kór [10], atrófiás laterális sclerosis (ALS) [11,12], rákos megbetegedések [13], allergiás betegségek [14]).
Az utóbbi időben vált világossá, hogy az antocianinokban gazdag ételek több fronton fejtik ki jótékony hatásukat, mely túlmutat a bogyós gyümölcsök jól ismert antioxidáns hatásán is. Ezek a folyamatok a következők:
- Serkentik a glükóz anyagcserét, csökkentik a glükóz felszívódását.
- Csökkentik az amyloid plakkok képződésének valószínűségét, valamint növelik ezek kialakulásával szemben a szervezet saját védekező készségét. (Az amyloid plakkok lerakódása egyértelműen megtalálható Alzheimer kórban szenvedő páciensek agyában.)
- Gátolják az LDL koleszterin oxidációját [16] és javítják a lipidprofilt [17, 19].
- Beindítják a rákos sejtek programozott sejthalálát (apoptózis) számos rákos sejtvonalban [20-23].
- Antivirális [24], antibakteriális [25] és parazitaölő hatással bírnak [26, 27].
- Gátolják a DNS károsodását [5, 28].
- Megakadályozzák a gyulladásos génexpressziót és csökkentik a gyulladás mértékét [5, 16].
- Csökkentik az erek áteresztőképességét, sérülékenységét [2].
- Fokozzák a nitrogén-oxid termelődését, mely fontos szerepet tölt be a sejtek közötti jelátvitelben [2, 16].
- Javítják az idegsejtek közötti jelátvitelt [29].
- Gátolják azokat a folyamatokat, melyek a tumorsejtek kemoterápiával szembeni ellenállásához vezetnek [30].
- Serkentik a karcinogén vegyületek és xenobiotikumok anyagcseréjét a szervezetben [30].
Fekete áfonya
A fekete áfonya elsősorban a szív- és érrendszeri betegségek elleni védelemben fejti ki hatását az angiotenzin konvertáz enzimre (ACE) gyakorolt erőteljes gátlása során. Ez az enzim hozzájárul a magas vérnyomás kialakulásához, mivel az erek összehúzódását okozza. A fekete áfonya csökkenti az inzulin rezisztenciát, így segíthet a cukorbetegség megelőzésében. Állatkísérletek eredményei alapján javítja a rövidtávú memóriát, így jelentősége lehet az Alzheimer-kór kialakulásának megelőzésében [52].
Az áfonyafélék csökkentik a mellrák kialakulásának esélyét, és állatkísérletek eredményei alapján serkentik az rákos sejtek apoptózisát [53]. A fekete áfonya kivonat védelmet nyújt a bélrendszer rákos megbetegedéseivel szemben [54-56].
A fekete áfonya kivonat serkenti azon enzimek termelődését, melyek a szemet érintő oxidatív stresszt gátolják, így védelmet nyújthat az öregedéssel összefüggő szemproblémák kialakulásával szemben (pl. makula degeneráció). Egy 2012-es tanulmány szerint a fekete áfonya megakadályozhatja azokat a korai, genetikai okokból jelentkező elváltozásokat, melyek elhízást, vagy cukorbetegséggel összefüggő látáskárosodást okozhatnak [58].
Egyéb áfonyafélék
Az áfonya rendkívül gazdag olyan polifenolokban, melyek képesek átlépni a vár-agy gáton. Kognitív képességekre gyakorolt serkentő hatása és az öregedéssel összefüggő memória romlás és agyi funkciók romlása elleni védőhatása jól ismert [81-83].
Kimutatták, hogy az áfonya nem csak javítja a kognitív funkciókat Alzheimer-kórban tesztelt állatokon, de csökkenti az amyloid plakkot felgyülemlését, és fokozza azoknak az immunrendszer általi lebontását az agyban [18]. Segítséget nyújt az aorta [84,85] és a miokardium (szívizom) védelmében, és megakadályozhatja a miokardiális infarktust követő szívproblémákat [86]. Csökkenti a vérnyomást és a lipid peroxidációt [87]. Továbbá preklinikai modelleken kimutatták, hogy csökkenti az inzulin rezisztenciát és javítja vércukorszint szabályozást [87,88]. Laboratóriumi kísérletekben az áfonya fokozta a rákos sejtek önpusztító mechanizmusait száj-, mell-, vastagbél- és prosztatarák esetén [60].
Tőzegáfonya
A vörös áfonya és tőzegáfonya valószínűleg legismertebb a képessége, hogy segít megelőzni a húgyúti fertőzéseket [110,111]. A kutatók vélekedése szerint azáltal, hogy gátolja a kólibaktérium tapadását a húgycsőre és a húgyhólyag falára, ezáltal megkönnyíti a szervezetet, hogy megszabaduljon a bakteriális fertőzéstől [112,113]. Hasonló elven a gyomorfekély elleni védelmet is biztosíthat azáltal, hogy megakadályozza a Helicobacter pylori baktérium hozzátapadását a gyomor falához [114,115].
Tőzegáfonya rákos sejtosztódás elleni aktivitás mutat in vitro és in vivo kísérletekben is több különböző típusú daganat esetében: gyomor-, nyelőcső- adenokarcinóma [116, 117], mell-, prosztata- , vastagbél és tüdőrák [118].
A tőzegáfonya vegyületek különböző mechanizmusok segítségével védik a szív-és érrendszer egészségét beleértve vérnyomás csökkentést, a vérlemezke aggregáció-gátlást és gyulladáscsökkentését [87,119].
Fekete rizs
A fekete rizs az ősi Kínában a "tiltott rizs" nevet kapta, mert a fogyasztása csak a kínai császár számára fenntartott privilégium volt, aki ezáltal kívánta biztosítani magának az egészséget és a hosszú életet.
A fekete rizs bár nem bogyós gyümölcs, aktív hatóanyagait tekintve nagyon hasonló az összetétele a bogyós gyümölcsökhöz. A fekete rizs mély fekete színű, és általában főzés hatására sötétlila színűvé válik. A sötét lila szín elsődlegesen az antocianin tartalomnak köszönhető, amely molekulák jóval nagyobb tömegszázalékban találhatók meg benne, mint más gabonafélékben.
A fekete rizs antocianinjainak 95%-a az ún. cianidin-3-O-béta-D-glükozid (C3G) molekula, amely vegyületnek tulajdonítják pl. a fekete áfonya legfőbb élettani hatásait. Ezáltal a fekete rizs kivonat óriási lehetőséget jelenthet a hagyományosan nagyon drága áfonyafélék terápiás célra való használatának kiváltásában.
A cianidin-3-O-béta-D-glükozid (C3G) nevezetű antocianin magasabb ORAC (Oxigénygyök Abszorpciós Kapacitás – az élelmiszerek antioxidáns hatásának jellemzésére szolgáló érték) értékkel rendelkezik, mint sok más vizsgált antocianin [28]. A C3G gátolja az UV által indukált szabadgyökök okozta károsodást [64], védelmet nyújt a májban végbemenő oxidatív károsodások ellen [65], védi a vérzsírokat a lipid peroxidációtól [66], valamint a vérerek számára is védelmet nyújt [67]. A C3G rendkívül fontos szereppel bír a retina szövetének és pigmentjeinek oxidatív folyamatokkal szembeni védelmében. Segíti a rodopszin (a retina fényelnyelő pigmentje) regenerációját [68]. A rodopszin elengedhetetlen a szürkületi látáshoz. Károsodása esetén hosszabb időbe telik, hogy szemünk újra alkalmazkodjon az erős fényviszonyokhoz. A C3G elősegíti a megfelelő rodopszin szint visszaállítását [69,70].
Fekete ribizli
Egy 2012-ben megjelent tudományos cikk rávilágított a fekete ribizliben rejlő terápiás lehetőségekre a szív- és érrendszeri, neurodegeneratív és szembetegségek, vesekő, valamint diabéteszes neuropátia esetében.
A fekete ribizli segít ellazítani az aorta izomzatát a nitrogén-oxid termelődésének elősegítése által [72], javítja a vérerek állapotát [72], növeli az LDL koleszterin oxidatív stresszel szembeni ellenálló képességét, így fejtve ki kardioprotektív hatását [71]. A fekete ribizli antocianin vegyületei javítják a vér áramlását az alkarban, valamint kimutatták izomláz és izom fáradtság csökkentő hatásukat is [74].
Szintén kimutatták számos káros baktérium szaporodását gátló [62,77], valamint jelentős antivirális hatását [78]. Enyhíti az allergia okozta légúti gyulladást, mely az asztma egyik vezető kiváltó oka [79]. Laboratóriumi kísérletek során azok az egerek, melyek fekete ribizli levet kaptak, hosszabb ideig éltek [80].
Fekete bodza
A fekete bodza természetes antivirális hatással bír Egy standardizált fekete bodza készítményről placebo-kontrollált, kettős vak kísérlet során mutatták ki, hogy 2-4 nappal rövidítette a szezonális influenza betegség lefutását [120,121]. Laboratóriumi kísérletek során a fekete bodza antocianin vegyületeinek a H1N1 sertésinfluenza vírushoz való kapcsolódását mutatták ki, mellyel megakadályozták a hordozósejt megfertőződését – a megelőzésben alkalmazott oseltamivirhez (Tamiflu®) hasonló módon [122]. Sejtkultúrás kísérletekben hatékonynak találták legalább 10 különféle influenza törzzsel szemben [120,121].
A fekete bodza kardioprotektív hatással is bír a lipid peroxidáció csökkentése által [123]; semlegesíti a lipid peroxilgyököket [123], megakadályozza az LDL koleszterin oxidációját [123], és jelentős védelmet nyújt az endothel sejtek számára az oxidatív stresszel szemben [124]. Egy nemrégiben végzett, figyelemre méltó kutatás szerint a fekete bodza kivonat csökkenti a magas vérzsír szintet (hiperlipidémia) és a lipid peroxidációt [125].
Açaí bogyó
Szerves vegyületek antioxidáns hatásának jellemzésére szolgál az ORAC érték (Oxigénygyök Abszorpciós Kapacitás) [31]. Az összes eddig vizsgált gyümölcs és zöldség közül az açaí rendelkezik az egyik legnagyobb ORAC értékkel [32]. Laboratóriumi kísérletek során az açaí kivonat 90,7 %-ban akadályozta meg a vastagbélrák [33], és 56-86%-ban a leukémia elburjánzását [34] a vizsgált emberi sejtekben.
Állatkísérletek során kimutatták az açaí szív-és érrendszer védő hatását. Az artéria falának hosszan tartó relaxációját (endothelium-függő értágulat) okozza [35], valamint csökkenti az össz- és a nem HDL típusú koleszterin szintet [36].
Az açaí jó eséllyel gyógyírt jelenthet az Alzheimer- és Parkinson-kórhoz hasonló idegrendszeri betegségek esetén. Az açaíval kezelt agyszövetben csökkent mértékben észleltek reaktív oxigéngyökök által okozott károsodást a szövetet alkotó lipid és fehérje komponensekben – függetlenül attól, hogy az agy melyik területéről vették a mintát [37]. Fagyasztva szárított açaí gyümölcspéppel folytatott vizsgálatok kimutatták annak jelentős gyulladásgátló hatását – melynek fontossága az időskori megbetegedések kezelésében mutatkozhat meg, mivel az időskori krónikus betegségek jelentős részének hátterében gyulladásos folyamatok állnak [38].
Egy 2011-es tanulmány szerint az açaí gyümölcspép fogyasztásával a vizsgált tíz túlsúlyos emberben csökkent a metabolikus szindrómáért felelős kiválasztott markerek szintje. Mindössze 1 hónap alatt az açaí csökkentette az éhomi vércukorszintet, az inzulinszintet és az összkoleszterin szintet is, valamint normalizálta az étkezést követő vércukorszint emelkedést [39].
Források:
Life Extension Magazine: Michael Downey - Uncovering the Broad-Spectrum Protection of Anthocyanins
Life Extension Magazine: Kirk Stokel - Broad-Spectrum Disease Defense with Novel Berry Extract
Kapcsolódó termék: YiYa Fekete áfonya bogyós gyümölcs komplex »
» Tudományos referenciák - Fekete áfonya és bogyós gyümölcsök
[1] Zafra-Stone S, Yasmin T, Bagchi M, Chatterjee A, Vinson JA, Bagchi D. Berry anthocyanins as novel antioxidants in human health and disease prevention. Mol Nutr Food Res. 2007 Jun;51(6): 675-83.
[2] Wallace TC. Anthocyanins in cardiovascular disease. Adv Nutr. 2011 Jan;2(1):1-7.
[3] Wedick NM, Pan A, Cassidy A, et al. Dietary flavonoid intakes and risk of type 2 diabetes in US men and women. Am J Clin Nutr. 2012 Apr;95(4):925-33. doi: 10.3945/ajcn.111.028894. Epub 2012 Feb 22.
[4] Duthie SJ. Berry phytochemicals, genomic stability and cancer: evidence for chemoprotection at several stages in the carcinogenic process. Mol Nutr Food Res. 2007 Jun;51(6):665-74.
[5] Available at: http://www.ors.od.nih.gov/pes/dats/food/balance/Documents/berries.pdf. Accessed December 12, 2012.
[6] Veberic R, Jakopic J, Stampar F, Schmitzer V. European elderberry (Sambucus nigra L.) rich in sugars, organic acids, anthocyanins and selected polyphenols. Food Chem. 2009;114:511-5.
[7] Koponen JM, Happonen AM, Mattila PH, Törrönen AR. Contents of anthocyanins and ellagitannins in selected foods consumed in Finland. J Agric Food Chem. 2007 Feb 21;55(4):1612-9. Epub 2007 Jan 30.
[8] Wu X, Beecher G, Holden JM, Haytowitz DB, Gebhardt SE, Prior RL. Concentrations of anthocyanins in common foods in the United States and estimation of normal consumption. J Agric Food Chem. 2006;54:4069-75.
[9] Ebadi M, Srinivasan SK, Baxi MD. Oxidative stress and antioxidant therapy in Parkinson’s disease. Prog Neurobiol. 1996;48:1-19.
[10] Markesbery WR, Carney JM. Oxidative alterations in Alzheimer’s disease. Brain Pathol. 1999;9:133-46.
[11] Olanow CW, Arendash GW. Metals and free radicals in neurode-generation. Curr Opin Neurol. 1994;7:548-58.
[12] Simonian NA, Coyle JT. Oxidative stress in neurodegenerative diseases. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 1996;36:83-106.
[13] Kovacic P, Jacintho JD. Mechanisms of carcinogenesis: focus on oxidative stress and electron transfer. Curr Med Chem. 2001; 8:773-96.
[14] Bowler RP, Crapo JD. Oxidative stress in allergic respiratory diseases. J Allergy Clin Immunol. 2002;110:349-56.
[15] Tsuda T, Horio F, Uchida K, Aoki H, Osawa T. Dietary cyanidin 3-O-beta-D-glucoside-rich purple corn color prevents obesity and ameliorates hyperglycemia in mice. J Nutr. 2003 Jul;133(7): 2125-30.
[16] Basu A, Rhone M, Lyons TJ. Berries: emerging impact on cardiovascular health. Nutr Rev. 2010 Mar;68(3):168-77.
[17] Sasaki R, Nishimura N, Hoshino H,e t al. Cyanidin 3-glucoside ameliorates hyperglycemia and insulin sensitivity due to downregulation of retinol binding protein 4 expression in diabetic mice. Biochem Pharamacol. 2007 Dec 3;74(11):1619-27. Epub 2007 Aug 10.
[18] Zhu Y, Bickford PC, Sanberg P, Giunta B, Tan J. Blueberry opposes beta-amyloid peptide-induced microglial activation via inhibition of p44/42 mitogen-activation protein kinase. Rejuvenation Res. 2008 Oct;11(5):891-901. doi: 10.1089/rej.2008.0757.
[19] Basu A, Wilkinson M, Penugonda K, Simmons B, Betts NM, Lyons TJ. Freeze-dried strawberry powder improves lipid profile and lipid peroxidation in women with metabolic syndrome: baseline and post intervention effects. Nutr J. 2009 Sept;8:43.
[20] Zikri NN, Riedl KM, Wang LS, Lechner J, Schwartz SJ, Stoner GD. Black raspberry components inhibit proliferation, induce apoptosis, and modulate gene expression in rat esophageal epithelial cells. Nutr Cancer. 2009 Nov;61(6):816-26.
[21] Shin DY, Lee WS, Lu JN, et al. Induction of apoptosis in human colon cancer HCT-116 cells by anthocyanins through suppression of Akt and activation of p38-MAPK. Int J Oncol. 2009 Dec;35(6):1499-504.
[22] Shin DY, Ryu CH, Lee WS, et al. Induction of apoptosis and inhibition of invasion in human hepatoma cells by anthocyanins from meoru. Ann N Y Acad Sci. 2009 Aug;1171:137-48.
[23] Li L, Adams LS, Chen S, Killian C, Ahmed A, Seeram NP. Eugenia jambolana Lam. berry extract inhibits growth and induces apoptosis of human breast cancer but not non-tumorigenic breast cells. J Agric Food Chem. 2009 Feb 11;57(3):826-31.
[24] Lee SH, Jeong HJ, Kim DW, et al. Enhancement of HIV-1 Tat fusion protein transduction efficiency by bog blueberry anthocyanins. BMB Rep. 2010 Aug;43(8):561-6.
[25] Akiyama H, Fujii K, Yamasaki O, Oono T, Iwatsuki K. Antibacterial action of several tannins against Staphylococcus aureus. J Antimicrob Chemother. 2001 Oct;48(4):487–91.
[26] Kolodziej H, Kiderlen AF. Antileishmanial activity and immune modulatory effects of tannins and related compounds on Leishmania parasitised RAW 264.7 cells. Phytochemistry. 2005 Sept;66(17):2056–71.
[27] Anthony JP, Fyfe L, Stewart D, McDougall GJ. Differential effectiveness of berry polyphenols as anti-giardial agents. Parasitology. 2011 Aug;138(9):1110-6.
[28] Acquaviva R, Russo A, Galvano F, et al. Cyanidin and cyanidin 3-O-beta-D-glucoside as DNA cleavage protectors and antioxidants. Cell Biol Toxicol. 2003;19:243-52.
[29] Shukitt-Hale B, Lau FC, Joseph JA. Berry fruit supplementation and the aging brain. J Agric Food Chem. 2008. Feb 13;56(3): 636-41.
[30] Seeram NP. Berry fruits for cancer prevention: current status and future prospects. J. Agric. Food Chem. 2008;56(3):630-5.
[31] Prior RL, Wu X, Schaich K. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary supplements. J Agric Food Chem. 2005 May 18;53(10): 4290-302.
[32] Available at: http://www.oracvalues.com/. Accessed December 4, 2012.
[33] Pacheco-Palencia LA, Talcott ST, Safe S, Mertens-Talcott S. Absorption and biological activity of phytochemical-rich extracts from açai (Euterpe oleracea Mart.) pulp and oil in vitro. J Agric Food Chem. 2008 May 28;56(10):3593-600.
[34] Del Pozo-Insfran D, Percival SS, Talcott ST. Açai (Euterpe oleracea Mart.) polyphenolics in their glycoside and aglycone forms induce apoptosis of HL-60 leukemia cells. J Agric Food Chem. 2006 Feb 22;54(4):1222-9.
[35] Rocha APM, Carvalho LC, Sousa SV, et al. Endothelium-dependent vasodilator effect of Euterpe oleracea Mart. (Açai) extracts in mesenteric vascular bed of the rat. Vasc Pharmacology. 2007 Feb;46(2):97-104.
[36] de Souza MO, Silva M, Silva ME, Oliveira RdeP, Pedrosa ML. Diet supplementation with açai (Euterpe oleracea Mart.) pulp improves biomarkers of oxidative stress and the serum lipid profile in rats. Nutrition. 2010 Jul-Aug;26(7-8):804-10.
[37] Spada PD, Dani C, Bortolini GV, Funchai C, Henriques JA, Salvador M. Frozen fruit pulp of Euterpe oleraceae Mart. (Açai) prevents hydrogen peroxide-induced damage in the cerebral cortex, cerebellum, and hippocampus of rats. J Med Food. 2009 Oct;12(5):1084-8.
[38] Schauss AG, Wu X, Prior RL, et al. Antioxidant capacity and other bioactivities of the freeze-dried Amazonian palm berry, Euterpe oleraceae mart. (acai). J Agric Food Chem. 2006 Nov 1;54(22):8604-10.
[39] Udani JK, Singh BB, Singh VJ, Barrett ML. Effects of Açai (Euterpe oleracea Mart.) berry preparation on metabolic parameters in a healthy overweight population: a pilot study. Nutr J. 2011 May 12;10:45.
[50] Persson IA, Persson K, Andersson RG. Effect of Vaccinum myrtillus and its polyphenols on angiotensin-converting enzyme activity in human endothelial cells. J Agric Food Chem. 2009 Jun 10;57(11):4626-9.
[51] Takikawa M, Inoue S, Horio F, Tsuda T. Dietary anthocyanin-rich bilberry extract ameliorates hyperglycemia and insulin sensitivity via activation of AMP-activated protein kinase in diabetic mice. J Nutr. 2010 Mar;140(3):527-33.
[52] Ramirez MR, Izquierdo I, do Carmo Bassols Raseira M, Zuanazzi JA, Barros D, Henriques AT. Effect of lyophilized Vaccinum berries on memory, anxiety, and locomotion in adult rats. Pharmacol Res. 2005 Dec;52(6):457-62.
[53] Nguyen V, Tang J, Oroudjev E, et al. Cytotoxic effects of bilberry extract on MCF7-GFP-tubulin breast cancer cells. J Med Food. 2010 Feb 4.
[54] Thomasset S, Berry DP, Cai H, et al. Pilot study of oral anthocyanins for colorectal cancer chemoprevention. Cancer Prev Res (Phila). 2009 Jul;2(7):625-33.
[55] Zhao C, Giusti MM, Malik M, Moyer MP, Magnuson BA. Effects of commercial anthocyanin-rich extracts on colonic cancer and nontumorigenic colonic cell growth. J Agric Food Chem. 2004 Oct 6;52(20):6122-8.
[56] Misikangas M, Pajari AM, Paivarinta E, et al. Three Nordic berries inhibit intestinal tumorigenesis in multiple intestinal neoplasia/+ mice by modulating beta-catenin signaling in the tumor and transcription in the mucosa. J Nutr. 2007 Oct;137(10):2285-90.
[57] Milbury PE, Graf B, Curran-Celentano JM, Blumberg JB. Bilberry (Vaccinium myrtillus) anthocyanins modulate heme oxygenase-1 and glutathione S-transferase-pi expression in ARPE-19 cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2007 May;48(5):2343-9.
[58] Mykkänen OT, Kalesnykas G, Adriaens M, Evelo CT, Törrönen R, Kaarniranta K. Bilberries potentially alleviate stress-related retinal gene expression induced by a high-fat diet in mice. Mol Vis. 2012;18:2338-51.
[59] Dai J, Patel JD, Mumper RJ. Characterization of blackberry extract and its antiproliferative and anti-inflammatory properties. J Med Food. 2007;10:258-65.
[60] Seeram NP, Adams LS, Zhang Y, et al. Blackberry, black raspberry, blueberry, cranberry, red raspberry, and strawberry extracts inhibit growth and stimulate apoptosis of human cancer cells in vitro. J Agric Food Chem. 2006 Dec 13;54(25):9329-39.
[61] Tsuda T, Horio F, Osawa T. Cyanidin 3-O-beta-D-glucoside suppresses nitric oxide production during a zymosan treatment in rats. J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo). 2002 Aug;48(4):305-10.
[62] Cavanagh HM, Hipwell M, Wilkinson JM. Antibacterial activity of berry fruits used for culinary purposes. J Med Food. 2003;6(1):57-61.
[63] González OA, Escamilla C, Danaher RJ, et al. Antibacterial effects of blackberry extract target periodontopathogens. J Periodontal Res. E pub 2012 Jul 19.
[64] Tsuda T, Shiga K, Ohshima K, Kawakishi S, Osawa T. Inhibition of lipid peroxidation and the active oxygen radical scavenging effect of anthocyanin pigments isolated from Phaseolus vulgaris L. Biochem Pharmacol. 1996 Oct 11;52(7):1033-9.
[65] Tsuda T, Horio F, Kato Y, Osawa T. Cyanidin 3-O-beta-D-glucoside attenuates the hepatic ischemia-reperfusion injury through a decrease in the neutrophil chemoattractant production in rats. J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo). 2002 Apr;48(2):134-41.
[66] Tsuda T, Horio F, Osawa T. Dietary cyanidin 3-O-beta-D-glucoside increases ex vivo oxidation resistance of serum in rats. Lipids. 1998 Jun;33(6):583-8.
[67] Serraino I, Dugo L, Dugo P, et al. Protective effects of cyanidin-3-O-glucoside from blackberry extract against peroxynitrite-induced endothelial dysfunction and vascular failure. Life Sci. 2003 Jul 18;73(9):1097-114.
[68] Matsumoto H, Nakamura Y, Tachibanaki S, Kawamura S, Hirayama M. Stimulatory effect of cyanidin 3-glycosides on the regeneration of rhodopsin. J Agric Food Chem. 2003 Jun 4;51(12):3560-3.
[69] Tirupula KC, Balem F, Yanamala N, Klein-Seetharaman J. pH-dependent interaction of rhodopsin with cyanidin-3-glucoside. 2. Functional aspects. Photochem Photobiol. 2009 Mar-Apr;85(2):463-70.
[70] Yanamala N, Tirupula KC, Balem F, Klein-Seetharaman J. pH-dependent interaction of rhodopsin with cyanidin-3-glucoside. 1. Structural aspects. Photochem Photobiol. 2009 Mar-Apr;85(2):454-62.
[71] Jang YP, Zhou J, Nakanishi K, Sparrow JR. Anthocyanins protect against A2E photooxidation and membrane permeabilization in retinal pigment epithelial cells. Photochem Photobiol. 2005 May-Jun;81(3):529-36.
[72] Nakamura Y, Matsumoto H, Todoki K. Endothelium-dependent vasorelaxation induced by black currant concentrate in rat thoracic aorta. Jpn J Pharmacol. 2002 May;89(1):29-35.
[73] Marniemi J, Hakala P, Maki J, Ahotupa M. Partial resistance of low density lipoprotein to oxidation in vivo after increased intake of berries. Nutr Metab Cardiovasc Dis. 2000 Dec;10(6):331-7.
[74] Matsumoto H, Takenami E, Iwasaki-Kurashige K, et al. Effects of blackcurrant anthocyanin intake on peripheral muscle circulation during typing work in humans. Eur J Appl Physiol. 2005 May;94(1-2):36-45.
[75] Nakaishi H, Matsumoto H, Tominaga S, Hirayama M. Effects of black current anthocyanoside intake on dark adaptation and VDT work-induced transient refractive alteration in healthy humans. Altern Med Rev. 2000 Dec;5(6):553-62.
[76] Gopalan A, Reuben SC, Ahmed S, Darvesh AS, Hohmann J, Bishayee A. The health benefits of blackcurrants. Food Funct. 2012 Aug;3(8):795-809.
[77] Puupponen-Pimia R, Nohynek L, Meier C, et al. Antimicrobial properties of phenolic compounds from berries. J Appl Microbiol. 2001 Apr;90(4):494-507.
[78] Knox YM, Hayashi K, Suzutani T, et al. Activity of anthocyanins from fruit extract of Ribes nigrum L. against influenza A and B viruses. Acta Virol. 2001;45(4):209-15.
[79] Hurst SM, McGhie TK, Cooney JM, et al. Blackcurrant proanthocyanidins augment IFN-gamma-induced suppression of IL-4 stimulated CCL26 secretion in alveolar epithelial cells. Mol Nutr Food Res. 2010 Jul;54 Suppl 2:S159-70.
[80] Jones E, Hughes RE. Quercetin, flavonoids and the life-span of mice. Exp Gerontol. 1982;17(3):213-7.
[81] Shukitt-Hale B, Carey AN, Jenkins D, Rabin BM, Joseph JA. Beneficial effects of fruit extracts on neuronal function and behavior in a rodent model of accelerated aging. Neurobiol Aging. 2007 Aug;28(8):1187-94.
[82] Devore EE, Kang JH, Breteler MM, Grodstein F. Dietary intakes of berries and flavonoids in relation to cognitive decline. Ann Neurol. 2012 Jul;72(1):135-43.
[83] Eating more berries may reduce cognitive decline in the elderly: flavonoid-rich blueberries and strawberries offer most benefit. Am J Alzheimers Dis Other Demen. 2012 Aug;27(5):358.
[84] Kalea AZ, Lamari FN, Theocharis AD, et al. Wild blueberry (Vaccinium angustifolium) consumption affects the composition and structure of glycosaminoglycans in Sprague-Dawley rat aorta. J Nutr Biochem. 2006 Feb;17(2):109-16.
[85] Norton C, Kalea AZ, Harris PD, Klimis-Zacas DJ. Wild blueberry-rich diets affect the contractile machinery of the vascular smooth muscle in the Sprague-Dawley rat. J Med Food. 2005;8(1):8-13.
[86] Ahmet I, Spangler E, Shukitt-Hale B, et al. Blueberry-enriched diet protects rat heart from ischemic damage. PLoS One. 2009 Jun 19;4(6).
[87] Basu A, Lyons TJ. Strawberries, blueberries, and cranberries in the Metabolic Syndrome: Clinical Perspectives. J Agric Food Chem. Epub 2011 Nov 29.
[88] DeFuria J, Bennett G, Strissel KJ, et al. Dietary blueberry attenuates whole-body insulin resistance in high fat mice by reducing adipocyte death and its inflammatory sequelae. J Nutr. 2009 Aug;139(8):1510-6.
[89] Osman N, Adawi D, Ahrne S, Jeppsson B, Molin G. Probiotics and blueberry attenuate the severity of dextran sulfate sodium (DSS)-induced colitis. Dig Dis Sci. 2008 Sep;53(9):2464-74.
[90] Lu S, Cheng ML, Li H, Wu J, Wang YP. Effects of blueberry on hepatic fibrosis and ultrastructural of hepatocytes in rats. Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2012 Apr 3;92(13):927-31.
[91] Zhang J, Lazarenko OP, Blackburn ML, Badger TM, Ronis MJ, Chen JR. Blueberry consumption prevents loss of collagen in bone matrix and inhibits senescence pathways in osteoblastic cells. Age (Dordr). 2012 May 4. [Epub ahead of print]
[92] Heim KC, Angers P, Léonhart S, Ritz BW. Anti-inflammatory and neuroactive properties of selected fruit extracts. J Med Food. 2012 Sep;15(9):851-4.
[110] Jepson RG, Craig JC. A systematic review of the evidence for cranberries and blueberries in UTI prevention. Mol Nutr Food Res. 2007 Jun;51(6):738-45.
[111] Takahashi S, Hamasuna R, Yasuda M, et al. A randomized clinical trial to evaluate the preventive effect of cranberry juice (UR65) for patients with recurrent urinary tract infection. J Infect Chemother. Epub 2012 Sep 8.
[112] Gupta K, Chou MY, Howell A, Wobbe C, Grady R, Stapleton AE. Cranberry products inhibit adherence of p-fimbriated Escherichia coli to primary cultured bladder and vaginal epithelial cells. J Urol. 2007 Jun;177(6):2357-60.
[113] Liu Y, Gallardo-Moreno AM, Pinzon-Arango PA, Reynolds Y, Rodriguez G, Camesano TA. Cranberry changes the physicochemical surface properties of E. coli and adhesion with uroepithelial cells. Colloids Surf B Biointerfaces. 2008 Aug 1;65(1):35-42.
[114] Zhang L, Ma J, Pan K, Go VL, Chen J, You WC. Efficacy of cranberry juice on Helicobacter pylori infection: a double-blind, randomized placebo-controlled trial. Helicobacter. 2005 Apr;10(2):139-45.
[115] Burger O, Weiss E, Sharon N, Tabak M, Neeman I, Ofek I. Inhibition of Helicobacter pylori adhesion to human gastric mucus by a high-molecular-weight constituent of cranberry juice. Crit Rev Food Sci Nutr. 2002;42(3 Suppl):279-84.
[116] Liu M, Lin LQ, Song BB, et al. Cranberry phytochemical extract inhibits SGC-7901 cell growth and human tumor xenografts in Balb/c nu/nu mice. J Agric Food Chem. 2009 Jan 28;57(2):762-8.
[117] Kresty LA, Howell AB, Baird M. Cranberry proanthocyanidins induce apoptosis and inhibit acid-induced proliferation of human esophageal adenocarcinoma cells. J Agric Food Chem. 2008 Feb 13;56(3):676-80.
[118] Neto CC. Cranberry and its phytochemicals: a review of in vitro anticancer studies. J Nutr. 2007 Jan;137(1 Suppl):186S-93S.
[119] McKay DL, Blumberg JB. Cranberries (Vaccinium macrocarpon) and cardiovascular disease risk factors. Nutr Rev. 2007 Nov;65(11):490-502.
[120] Barak V, Halperin T, Kalickman I. The effect of Sambucol, a black elderberry-based, natural product, on the production of human cytokines: I. Inflammatory cytokines. Eur Cytokine Netw. 2001 Apr-Jun;12(2):290-6.
[121] Zakay-Rones Z, Varsano N, Zlotnik M, et al. Inhibition of several strains of influenza virus in vitro and reduction of symptoms by an elderberry extract (Sambucus nigra L.) during an outbreak of influenza B Panama. J Altern Complement Med. 1995;1(4):361-9.
[122] Roschek B Jr, Fink RC, McMichael MD, Li D, Alberte RS. Elderberry flavonoids bind to and prevent H1N1 infection in vitro. Phytochemistry. 2009 Jul;70(10):1255-61.
[123] Ciocoiu M, Miron A, Mares L, et al. The effects of Sambucus nigra polyphenols on oxidative stress and metabolic disorders in experiemental diabetes mellitus. J Physiol Biochem. 2009 Sep;65(3):297-304.
[124] Youdim KA, Martin A, Joseph JA. Incorporation of the elderberry anthocyanins by endothelial cells increases protection against oxidative stress. Free Radic Biol Med. 2000 Jul 1;29(1):51-60.
[125] Dubey P, Jayasooriya AP, Cheema SK. Fish oil induced hyperlipidemia and oxidative stress in BioF1B hamsters is attenuated by elderberry extract. Appl Physiol Nutr Metab. 2012 Jun;37(3):472-9.
